Histoloogia on inimese koe uurimine. See termin koosneb kahest kreeka ja ladina keele terminist. Kreeka keeles “Histos” tähendab “kude” ja ladina keeles “logos” õpetamist.
Mis on histoloogia?
Histoloogia on inimese koe uurimine. Sisse histoloogia, kasutavad meditsiinitöötajad erinevate struktuuride struktuuri nägemiseks selliseid tehnilisi vahendeid nagu valgusmikroskoop. Histoloogias kasutavad arstid erinevate struktuuride struktuuri äratundmiseks selliseid tehnilisi vahendeid nagu valgusmikroskoop. Mikroskoopiline anatoomia jagab elundid nende komponentide poolest, mis muutuvad järk-järgult väiksemaks, kui uuringud lähevad erinevatesse struktuuridesse. Selle meditsiini erialaga tegelevad peamiselt varase diagnoosimise, patoloogia, anatoomia ja bioloogia valdkonnad.
Ravi ja teraapiad
Mikroskoopiline anatoomia jagab elundid nende suuruse ja komponentide poolest kolme rühma. Histoloogia kui inimkoe uurimine on bioloogia, meditsiini, anatoomia ja patoloogia peamine komponent. Tsütoloogia läheb juba sügavamale inimese koekihtidesse ning tegeleb rakuteooria ja funktsionaalse koostisega. Molekulaarbioloogia on pühendatud inimrakkude väikseimatele komponentidele molekulid, mida nimetatakse ka osakesteks. Histoloogia peamine ülesanne on kasvajate varajane diagnoosimine. Parimate uurimismeetodite abil saavad arstid teada, kas muutused on patoloogilised, st pahaloomulised kasvajad, või on kude endiselt terve ja kasvajad on healoomulised. Lisaks suudavad histoloogid tuvastada nii bakteriaalseid, parasiit- ja põletikulisi haigusi kui ka ainevahetushäireid. Koediagnoosimine on ka histoloogilistel leidudel põhinevate järgnevate terapeutiliste lähenemisviiside lähtepunkt. Histoloogid ja patoloogid kasutavad histoloogiat väikeste asjade suureks või nähtavaks muutmiseks. Osa haigestunud koest eemaldatakse patsiendilt proovi ekstsisiooniga (biopsia). Seejärel uurib patoloog seda koeproovi, tehes mikromeetri õhukesed läbilõikemustrid. Järgmises etapis värvitakse need proovid ja vaadatakse neid valgusmikroskoobi all. Mõnikord kasutatakse ka kõrglahutusega elektronmikroskoopi, kuid seda kasutatakse peamiselt teadusuuringutes. Histotehnika tegeleb sellega, kuidas kude enne uuringut töödeldakse. Selle etapi eest vastutab meditsiiniline tehniline assistent (MTA). Stabiliseerimise saavutamiseks fikseerib ta koe. Assistent vaatab lõigatud kude makroskoopiliselt (silma järgi), dehüdreerib ja immutab seda vedelikus petrooleum. Seejärel blokeeritakse koeproov sisse petrooleum ja järgmine samm on teha 2 kuni 5 um läbimõõduga lõik. See kinnitatakse klaasist slaidile ja värvitakse. Tavapärane tehnika tase on FFBE preparaadi valmistamine, mis on “formaliiniga fikseeritud parafiiniga varjatud kude”. Koeproov värvitakse hematoksüliin-eosiin. See protsess võtab esimesest sammust viimaseni ühe kuni kaks päeva. Vähem aeganõudev koeuuring on külmutatud sektsiooni uuring. Seda tehakse alati, kui kirurg vajab operatsiooni ajal õigeaegset teavet eemaldatud koe kohta. Näiteks kui kirurg eemaldab kasvaja neer, vajab ta operatsiooni ajal teavet koe olemuse kohta. Ta peab teadma, kas kasvaja on juba täielikult eemaldatud või näitab ääreosas asuv pahaloomuline kude edasisi patoloogilisi muutusi. Külmutatud sektsiooni uuringu tulemused määravad operatsiooni edasise käigu. Koeproov külmutatakse ja stabiliseeritakse -20 ° C juures kümne minuti jooksul. Mikrotoomi abil tehakse 5–10 um lõik, mis kinnitatakse mikroskoobi slaidina klaasplaadile ja värvitakse. Leiud edastatakse viivitamatult operatsioonisaali, et kirurg saaks teha otsuse operatsiooni jätkamise kohta.
Diagnoos ja uurimismeetodid
Histoloogia peamised tehnilised vahendid on erinevad värvimismeetodid. Histoloogia liigitab rakustruktuurid vastavalt nende värvivastusele kasutatud värvainele. Need on bioloogilised värvimismeetodid. Neutrofiilseid rakustruktuure ei värvita ei hape ega aluseline värvained. Komponendid on lipofiilsed. Basofiilsed rakustruktuurid töötavad põhiliste värvained nagu hematoksüliin. Atsidofiilsed rakustruktuurid värvuvad aluselise ja happelise värvusega värvained nagu eosiin, happeline fukssiin ja pikriinhape. Teised rakustruktuurid on nukleofiilsed ja argyrofiilsed. Argyrophilic rakustruktuurid seovad hõbe ioonid, nukleofiilsed DNA-d siduvad ja aluselised värvained. Hematoksüliin-eosiin värvimist (HE-värvimist) kasutatakse kõige sagedamini arvuti juhitavate automaatsete värvimismasinate rutiinse ja uuringu värvimisega. Paralleelselt kasutatakse üksikute küsimuste jaoks käsitsi spetsiaalseid plekke. Histokeemilised uuringud pakuvad keemiliste-füüsikaliste protsesside keerukat pilti elektrodsorptsiooni, difusiooni (jaotus) ja pindade adsorptsioon seoses laengujaotustega värvis molekulid. Ioonisidumine tekitab peamise sidumisjõu, sidudes happelised värvid aluselistega valgud. Histokeemilistes protsessides reageerib värv koe koostisosadele. Ensüümi histokeemilised meetodid põhjustavad raku aktiivsuse kaudu värvi arengut ensüümide. Alates 1980. aastatest on klassikalist histokeemiat täiendatud immunohistokeemiaga. See tuvastab raku omadused antigeeni-antikeha reaktsiooni põhjal. Seda visualiseeritakse mitme viilu meetodil, mis põhineb antigeeni (valgu) koha värvireaktsioonil. Kümme aastat hiljem leiutati kohapealne hübridiseerimine. Spetsiifilised nukleotiidjärjestused tuvastatakse kaheahelalise DNA liitmisel ja üksikute ahelate spontaansel dokkimisel RNA või DNA abil. Nukleiinhappejärjestused visualiseeritakse fluorokroommärgisega sondide abil. Seda meetodit nimetatakse fluorestsents in situ hübridisatsioon (KALA). Oluliste värvimismeetodite hulka kuuluvad asaanvärvimine, Berlineri sinine reaktsioon, Golgi värvimine, Grami värvimine ja Giemsa värvimine. Need värvimismeetodid töötavad punaliblede tuumade, punaka tsütoplasma, siniste retikulaarsete kiudude ja kollageenide, punaste lihaskiududega, tuvastades raud ioonid ”, üksikute ioonide hõbetamine, bakterite diferentseerumine ja eristamine veri rakkude värvimine.
